实验动物各种体液、的采集方法
消化液的采集
(一) 唾液
1. 直接抽取法 在急性实验中， 可用吸管直接插入动物口腔或唾液腺导管抽吸唾液，此法非常简单，但从口腔抽吸唾液会有杂质混入。
2. 制造腮腺瘘法 在慢性实验中，小动物实验外包，收集狗的唾液，要用手术方法将腮腺导管开口移向体外，即以腮腺导管为中心，切成一直径约2～3cm的圆形粘膜片，将此粘膜片，与周围组织分开，穿过皮肤切口引到颊外，将带有导管开口的粘膜片与周围的皮肤缝合，腮腺分泌的唾液就流出颊外。这种方法可以收集到较纯净的唾液。
(二)胃液
1. 直接收集胃液法 急性实验时，先将动物，将插胃管经口插入胃内，在灌胃管的出口连一，用此可收集到胃液，此法适用于狗等大型动物。如是大鼠，需手术剖腹，从幽门端向胃内插入一塑料管，再由口腔经食道将一塑料管插入前胃，用pH7.5、35℃左右的生理盐水，以12ml/h的流速灌胃，收集流出液，进行分析。
2. 制备胃瘘法 在慢性实验中，收集胃液多用胃瘘法，如全胃瘘法、巴氏小胃瘘法、海氏小胃瘘法等。制备小胃是将动物的胃分离出一小部分，缝合起来形成小胃，主胃与小胃互不相通，主胃进行正常消化，从小胃可收集到纯净的胃液。应用该法，可以待动物恢复健康后，在动物清醒状态下反复采集胃液。
(三)胰液和胆汁
在动物实验中，主要是通过对胰总管和胆总管的插管而获得胰液或胆汁。狗的胰总管开口于十二指肠降部，在紧靠肠壁处切开胰管，结扎固定并与导管相连，即可见无色的胰液流入导管。大鼠的胰管与胆管汇集于一个总管，在其入肠处插管固定，并在近肝门处结扎和另行插管，实验动物外包公司，可分别收集到胰液和胆汁。
有时也可通过制备胰瘘和胆囊瘘来获得胰液和胆汁。
实验动物的选择在此，提几点原则和方法。
第①，做什么样的实验？什么动物适合本实验？做什么实验，这是选题时就确定好了的。肯定是经过论证的。无需多讲。用什么样的动物呢？我想，大多是参照文献，再结合自己对实验动物的了解。选题之时就肯定阅读过很多文献了，因此不会陌生。
如：做高、动脉粥样硬化，我想大多数人会选择大鼠、兔子，动物实验外包，也可以选金黄地鼠、鹌鹑，少数人会选小鼠，但我想用狗和猴的基本上不会有吧。因为要选择比较容易形成此疾病的动物，且要易得。
所以，对于不太熟悉的人来说，要多看文献，参考别人是如何选择的。就算是对动物比较了解，系统学过这方面知识的，也要多看文献，综合权衡。切忌随意地凭空想像。
第二，采取什么样的方法造模？做动物实验通常是要造模的。选择什么样的方式？这要从实验的目的及条件入手。造，可以用手术，也可以用。其中有四氧及链脲佐菌素（STZ）。后者用得较多，且为国际认同。
而四氧目前用得较少了。造模方法一是参照《药理实验方法学》，二是参照文献。造模方法有时也决定了你的动物选择。像做手术造动脉粥样硬化，我想用大鼠比小鼠来得方便吧？
第三，动物实验外包公司，经费承受能力如何？做实验也要精打细算。不可能为了所谓的高水平、技术而不顾实验室的条件。像做高脂动物模型，假设经费只有一万多元，一定要弄个敲除APoE基因的小鼠来做，恐怕没人认同。做一个简单的镇痛实验，你非得要用SPF实验室，这也是不太实际的，也是没必要的。
小鼠xiao喘模型
造模方法
致敏：小鼠在清洁级实验动物房适应性饲养1周，于造模当天、第8天经腹腔无菌注射抗原液0.2 ml
激发：第二周，每日上午8～10时将小鼠置于自制密闭雾化箱中，给予含10mg/ml卵清蛋白溶液超声雾化吸入(现配现用)，每日1次，每次30min以激发xiao喘，连续激发14-21 d。成功的模型表现：小鼠出现烦躁不安，进而呼吸加快、加深，静伏不动、弓背，严重者伸颈、缩胸、收缩呈喘xi状，甚至大小便失禁等。
造模照片
模型图片
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